透析袋的使用方法透析原理   透析是指溶質(zhì)從半透膜的一側(cè)透過膜至另一側(cè)的過程，任何天然的（如腹膜）或人造的半透膜，只要該膜含有使一定大小的溶質(zhì)通過的孔徑，那么這些溶質(zhì)就可以通過彌散和對流從膜的一側(cè)移動到膜的另一側(cè)。
   透析的動力是擴散壓，擴散壓是由橫跨膜兩邊的濃度梯度形成的。透析的速度反比于膜的厚度，正比于欲透析的小分子溶質(zhì)在膜內(nèi)外兩邊的濃度梯度，還正比于膜的面積和溫度，通常是4℃透析，升高溫度可加快透析速度。
   人體內(nèi)的毒物包括代謝產(chǎn)物，藥物，外源性毒物，只要其原子量或分子量大小合適，就能夠通過透析清除體外。其基本原理是彌散和對流。彌散就是半透膜兩側(cè)液體各自所含溶質(zhì)濃度梯度及它所形成的不同滲透濃度，溶質(zhì)從濃度高的一側(cè)通過半透膜向濃度低的一側(cè)移動。對流也稱超濾，是指溶質(zhì)和溶劑因透析膜兩側(cè)的靜水壓和滲透壓梯度的不同而跨膜轉(zhuǎn)運的過程。
    自ThomasGraham1861年發(fā)明透析方法至今已有一百多年。透析已成為生物化學實驗室zui簡便zui常用的分離純化技術(shù)之一。在生物大分子的制備過程中，除鹽、除少量有機溶劑、除去生物小分子雜質(zhì)和濃縮樣品等都要用到透析的技術(shù)。
   透析只需要使用的半透膜即可完成。通常是將半透膜制成袋狀，將生物大分子樣品溶液置入袋內(nèi)，將此透析袋浸入水或緩沖液中，樣品溶液中的大分子量的生物大分子被截留在袋內(nèi)，而鹽和小分子物質(zhì)不斷擴散透析到袋外，直到袋內(nèi)外兩邊的濃度達到平衡為止。保留在透析袋內(nèi)未透析出的樣品溶液稱為“保留液”，袋（膜）外的溶液稱為“滲出液”或“透析袋”。
   透析膜可用動物膜和玻璃紙等，但用的zui多的還是用纖維素制成的透析膜，目前常用的是美國Union Carbide（聯(lián)合碳化物公司）和美國光譜醫(yī)學公司生產(chǎn)的各種尺寸的透析管，截留分子量MwCO（即留在透析袋內(nèi)的生物大分子的zui小分子量，縮寫為MwCO）通常為1萬左右。
透析袋的使用方法使用前處理：
  1. 把透析袋剪成適當長度（10-20cm）的小段。
  2. 在大體積的2%（W/V）碳酸氫鈉和 10mmol/L EDTA（pH8.0）中將透析袋煮沸10分鐘。
  3. 用蒸餾水*清洗透析袋。
  4. 放在 1mmol/L EDTA（pH 8.0）中將之煮沸10分鐘。
  5.冷卻后，存放于4度，必須確保透析袋始終浸沒在溶液內(nèi)。從此時起取用透析袋是必須戴手套。 
  6. 用前在透析袋內(nèi)裝滿水然后排出，將之清洗干凈。
透析膜 （前處理方法如下）：
  1. 戴手套把透析膜剪成適當長度，浸在蒸餾水中 15 min 泡軟。
  2. 浸入 10 mM sodium bicarbonate 中，并加熱至 80℃，一邊攪拌至少 30min。
  3. 換到 10 mM Na2•EDTA 中浸泡 30 min，以新鮮的 EDTA 同樣方法處理三次。
  4. 再用 80℃ 蒸餾水洗 30 min，然后換到 20% 酒精中，放在 4℃冰箱中保存。
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