細(xì)胞篩網(wǎng)為獲得單細(xì)胞懸液的工具，與50ml離心管配套使用，分散細(xì)胞團(tuán)塊或原代組織，研究方向?yàn)榱魇郊?xì)胞，微載體與細(xì)胞分離、過(guò)濾細(xì)胞，三種網(wǎng)孔徑配合不同類(lèi)型的樣品使用不同的顏色可區(qū)別不同的孔徑型號(hào)，單獨(dú)包裝，γ射線滅菌，根據(jù)不同細(xì)胞培養(yǎng)的需要選擇。

    細(xì)胞篩網(wǎng)所有組織培養(yǎng)處理都是使聚苯乙烯具有親水性，且包含各種支持細(xì)胞培養(yǎng)的帶負(fù)電的官能團(tuán)。所有組織培養(yǎng)處理都在一真空室中進(jìn)行*的氣溶膠組織培養(yǎng)表面處理，保證細(xì)胞良好黏附、鋪展和生長(zhǎng)，導(dǎo)入了一系列正電荷含氮集團(tuán)，以培養(yǎng)更多不同類(lèi)型的細(xì)胞，某些特殊尤其是眾多的干細(xì)胞或細(xì)胞系細(xì)胞的貼壁和鋪展 疏水性更強(qiáng)，能降低細(xì)胞貼壁。細(xì)胞篩網(wǎng)用吸管將稀釋的血液沿離心管壁徐徐加到分離液面上，用力要輕，避免血液沖入分離液中，使得稀釋血重疊在分離液面以上，擰緊管蓋。稀釋血與分離液的高度比在1：2-2：1之間。原則上兩者的總高度不超過(guò)離心管的2/3。

    將離心管放置于水平離心機(jī)中，室溫下 2000rpm離心20min。離心過(guò)程中要觀察離心速度是否正確，且在停止時(shí)選擇“no break”，避免因?yàn)榧眲p速將已經(jīng)分離的單個(gè)核細(xì)胞層重新弄混。注意離心結(jié)束時(shí)的減速過(guò)程，不要太快。離心結(jié)束后可見(jiàn)管內(nèi)分為四層，細(xì)胞篩網(wǎng)從上至下分別為：血漿層（含部分血小板）、白膜層（含單個(gè)核細(xì)胞及少量血小板）、分離液層、粒細(xì)胞及紅細(xì)胞層。將吸管輕輕穿過(guò)血漿層至白膜層，沿離心管周緣吸出血漿層與分離液層界面間的細(xì)胞篩網(wǎng)，置于新離心管中。盡量少吸取分離液。細(xì)胞篩網(wǎng)加吸出體積5倍以上液體，用吸管吹打均勻，避免產(chǎn)生氣泡，液拄高度不要超過(guò)離心管的2/3。室溫1500rpm離心10min，快速傾倒出上清液。

    細(xì)胞篩網(wǎng)注意吹打均勻，不要有細(xì)胞團(tuán)塊。室溫下1500rpm離心5min，洗滌兩次。zui后一次洗滌時(shí)定量加入RPMI1640，吹打均勻后取樣計(jì)數(shù)細(xì)胞，zui后一次離心完畢傾倒出上清液后請(qǐng)請(qǐng)要度離心管，將管底細(xì)胞搖勻。根據(jù)上一步的計(jì)數(shù)結(jié)果，用含F(xiàn)BS10%-20%、雙抗的RPMI1640培養(yǎng)液將細(xì)胞配成所需濃度。離心速度太慢或時(shí)間不足時(shí)，淋巴細(xì)胞層較薄，且在這個(gè)層面上有紅細(xì)胞混雜；離心速度太快或時(shí)間過(guò)長(zhǎng)時(shí)，淋巴細(xì)胞層相對(duì)分散，會(huì)進(jìn)入下面的分離液層，每次將離心管帶入超凈臺(tái)內(nèi)時(shí)要用酒精擦拭細(xì)胞篩網(wǎng)，尤其管口和管帽。